真核細胞DNA提取試劑盒的制備與定量

   制備基因組 DNA 是進行基因結構和功能研究的重要步驟，通常要求得到的片段長度不小于 100-200kb。在 DNA 提取過程中應盡量避免使 DNA 斷裂和降解的各種因素，以保證 DNA 的完整性，為后續實驗打下基礎。
      一般真核細胞基因組 DNA 有 10???bp，可從新鮮組織、培養細胞或低溫保存的組織細胞中提取，常采用在 EDTA 及 SDS 等試劑存在下用蛋白酶 K 消化細胞，隨后用酚抽提的方法。通過該方法獲得的 DNA 經酶切后可用于 Southern 分析，也可作為 PCR 的模板、用于文庫構建等實驗。

根據材料來源不同，需采取不同的材料處理方法，而后的DNA 提取方法大體類似，但都應考慮以下兩個原則：

防止和抑制DNase 對 DNA 的降解；

盡量減少對溶液中DNA 的機械剪切破壞。

一、試劑準備

TE：10mM Tris-HCl (pH 7.8)；1mM EDTA (pH 8.0)

TBS：25mM Tris-HCl (pH 7.4)；200mM NaCl；5mM KCl

裂解緩沖液：250mM SDS；使用前加入蛋白酶 K 至 100μg/ml

20% SDS

2mg/ml 蛋白酶 K

Tris 飽和酚（pH 8.0）、酚 / 氯仿（酚∶氯仿 = 1∶1）、氯仿

無水乙醇、75% 乙醇

二、操作步驟

（一）材料處理

新鮮或冰凍組織處理：

⑴ 取組織塊 0.3-0.5cm3，剪碎，加 TE 0.5ml，轉移到勻漿器中勻漿；

⑵ 將勻漿液轉移到 1.5ml 離心管中；

⑶ 加 20% SDS 25μl，蛋白酶 K (2mg/ml) 25μl，混勻；

⑷ 60°C 水浴 1-3hr。

培養細胞處理：

⑴ 將培養細胞懸浮后，用 TBS 洗滌一次；

⑵ 離心 4000g×5min，去除上清液；

⑶ 加 10 倍體積的裂解緩沖液；

⑷ 50-55°C 水浴 1-2hr。

（二）DNA 提取

加等體積飽和酚至上述樣品處理液中，溫和、充分混勻3min；

離心5000g×10min，取上層水相到另一 1.5ml 離心管中；

加等體積飽和酚，混勻，離心5000g×10min，取上層水相到另一管中；

加等體積酚/ 氯仿，輕輕混勻，離心 5000g×10min，取上層水相到另一管中。如水相仍不澄清，可重復此步驟數次；

加等體積氯仿，輕輕混勻，離心5000g×10min，取上層水相到另一管中；

加1/10 體積的 3M 醋酸鈉（pH 5.2）和 2.5 倍體積的無水乙醇，輕輕倒置混勻；

待絮狀物出現后，離心5000g×5min，棄上清液；

沉淀用75% 乙醇洗滌，離心 5000g×3min，棄上清液；

室溫下揮發乙醇，待沉淀將近透明后加50-100μl TE 溶解過夜。

（三）DNA 定量和電泳檢測

DNA 定量：

DNA 在 260nm 處有最大吸收峰，蛋白質在 280nm 處有最大吸收峰，鹽和小分子則集中在 230nm 處。因此，可用 260nm 波長分光測定 DNA 濃度，OD 值為 1 相當于大約 50μg/ml 雙鏈 DNA。

若用1cm 光徑，用 H?O 稀釋 DNA 樣品 n 倍并以 H?O 為空白對照，根據讀出的 OD???值可計算樣品稀釋前的濃度：

DNA（mg/ml）=50×OD???讀數 × 稀釋倍數 / 1000

DNA 純品的 OD???/OD???為 1.8，可根據該比值估計 DNA 純度：比值較高說明含有 RNA，比值較低說明有殘余蛋白質存在。

OD???/OD???的比值應在 0.4-0.5 之間，若比值較高說明有殘余的鹽存在。

電泳檢測：

取1μg 基因組 DNA 在 0.8% 瓊脂糖凝膠上電泳，檢測 DNA 的完整性或多個樣品的濃度是否相同。電泳結束后在點樣孔附近應有單一的高分子量條帶。

三、注意事項

所有用品均需要高溫高壓處理，以滅活殘余的DNA 酶；

所有試劑均用高壓滅菌雙蒸水配制；

用大口滴管或吸頭操作，以盡量減少打斷DNA 的可能性；

用上述方法提取的DNA 純度可滿足一般實驗（如 Southern 雜交、PCR 等）需求。如要求更高純度，可進入蘇州阿爾法生物實驗器材有限公司? 官網參考有關資料進行DNA 純化。